Variables evaluadas

Rendimiento (R). Se obtuvo el peso de los frutos (unidad experimental) cosechados mediante una balanza digital portátil OHAUS^® con aproximación de 0,01 g. Los datos obtenidos se reportan en kg m^-2.

Número de frutos por racimo (NFPR). Se obtuvo al dividir el total de frutos cosechados entre el total de racimos.

Peso promedio de fruto (PPF). Producto del cociente del valor de rendimiento y el número total de frutos cosechados; el resultado se expresó en gramos (g).

Color. Se determinó de forma directa sobre la epidermis del fruto con colorímetro (X-Rite® serie SP62, Michigan, USA) se tomaron los valores L, a y b en la región ecuatorial de cada fruto. Con estos valores se calculó el ángulo de tono (hue) y la pureza del color (croma) con las fórmulas: Hue = arctan (b*a^-1); Croma = (a²+b²)'^/2; y la luminosidad L obtenido directamente con el colorímetro, los cuales corresponden al espacio de color L*a*b* (^{Minolta, 1994}).

Firmeza (F). La medición se realizó en la zona ecuatorial del fruto mediante un penetrómetro (Chatillón®, AMETEK, Florida, USA) provisto de un puntal en forma de cono. La fuerza aplicada hasta la penetración del puntal se expresó en Newtons (N mm^-1).

Sólidos solubles totales (SST). Los sólidos solubles totales (°Brix) se cuantificaron con un refractómetro digital portátil PAL-1® (ATAGO, Washington, USA) el cual utiliza una escala de 0-53°, y para realizar la medición se colocó una gota de jugo del fruto en la pantalla del refractómetro procediendo a tomar la lectura.

Acidez titulable (AT). Se determinó de acuerdo a la metodología propuesta por la AOAC (AOAC, 1990), con 20 g de pulpa que fue neutralizada con NaOH 0,1 N, utilizando fenolftaleína al 1% como indicador. Los resultados se reportaron en % de ácido cítrico (ácido orgánico prevaleciente).

Vitamina C (VC). Se estimó de acuerdo con el método propuesto por ^{Jacota y Dani (1982}) con ligeras modificaciones. Se homogeneizaron 4 g de fruto en 5 mL de ácido tricloroacético al 20%, la mezcla se dejó reposar por 5 min en frio (hielo) y se centrifugó durante 20 min a 15000 rpm a 4 °C. Posteriormente se tomó una alícuota de 0,2 mL del sobrenadante de cada muestra y se adicionaron 1,8 mL de agua destilada y 0,2 mL del reactivo Folin-Ciocalteu al 10%. La mezcla se agitó vigorosamente y se dejó en reposo por 10 min para posteriormente realizar la lectura de absorbancia a 760 nm. La concentración se expresó en mg 100 g^-1 de peso fresco mediante una curva estándar de ácido ascórbico.

Fenoles totales (FT). La determinación de fenoles totales se llevó a cabo mediante el método de Folin y Ciocalteu planteado por ^{Waterman y Mole (1994}), con las siguientes modificaciones: se tomaron 300 |jL del extracto etanólico (1,0 g de pulpa en 5 mL de etanol, homogeneizados con 24 h de reposo) a los que se le adicionaron 8,0 mL de agua destilada, 0,5 mL del reactivo de Folin y Ciocalteu, respectivamente, y se agitó; finalmente se agregaron 1,5 mL de solución de Na₂CO₃ al 20% a cada muestra y se volvió a agitar, dejando reposar durante 2 h bajo condiciones de oscuridad. Se tomó la lectura de absorbancia a 760 nm. Los resultados se expresaron en mg 100 g^-1 de peso fresco, de acuerdo a una curva estándar de ácido tánico.

Licopeno (Li). La determinación se realizó empleando el método modificado de ^{Sadler et al. (1990}). Se homogeneizaron 20 g de pulpa con agua destilada, la mezcla obtenida fue colocada en un frasco envuelto en papel aluminio y secadas a 38°C. Se colocó 0,1 g de la pasta en tubos de ensayo cubiertos con papel aluminio, se les adicionaron 30 mL de una mezcla de hexano/ etanol/acetona en la proporción 2:1:1 y se agitaron por 10 min. Posteriormente, se adicionaron 18 mL de agua destilada y se agitó durante 5 min hasta la separación de la fase acuosa y orgánica. Con matraces de separación se tomó y midió el volumen de la fase orgánica a la cual se le midió el valor de absorbancia a 470 nm. La cuantificación se realizó mediante la fórmula de ^{Inbaraj et al. (2008}) y los resultados se expresaron en mg 100 g^-1 de peso fresco.

Capacidad antioxidante (CA). Se realizó de acuerdo con el método ABTS (2,2'azinobis (3-etilbenzotiazolin-6-ácido sulfónico) descrito por ^{Ozgen et al. (2006}), para lo cual el radical ABTS*⁺ se formó tras la reacción de ABTS (7 mM) con persulfato potásico (2,45 mM, concentración final) incubados a temperatura ambiente y en oscuridad durante 24 h. Una vez formado el radical ABTS*⁺ este se diluyó con PBS (solución buffer de acetato de sodio) (pH 4,5) hasta obtener un valor de absorbancia de 0,7 ± 0,1 a 734 nm (longitud de máxima absorción). Para el ensayo, se mezclaron 3,9 ml de la solución ABTS*⁺ y 100 |jl de extracto de la muestra, dejándose reposar por 2 h, donde la lectura de absorbancia se realizó a 734 nm. Los resultados se expresan en TEAC (actividad antioxidante equivalente a Trolox).

Análisis estadístico. Se realizó un análisis de varianza (ANOVA) y comparación de medias de Tukey (P < 0,05), en las que se empleó el programa de análisis estadístico Statistical Analysis System (SAS, 2002).

Color

Luminosidad. La utilización de diferentes niveles de CE de la solución nutritiva de Steiner no representó una variación en el comportamiento de la luminosidad del color del fruto, donde se encontró un rango de valores de 40,67 y 42,31 (Tabla 3). En relación con estos resultados, datos similares de brillantez son reportados por ^{Cruz-Crespo y Sandoval-Villa (2011}) en frutos de tomate saladette 'Charleston' cultivados con concentraciones de la solución de Steiner de 0, 50, 75 y 100%. Sin embargo, en un trabajo realizado en la variedad de tomate 'Durinta', se indicaron valores de 70,1 a 72,9, con intervalos de variaciones de conductividad más elevados a los estudiados en este trabajo (2,8 a 7,7 dS m^-1) (^{Kim et al., 2008}).

Al comparar entre genotipos (Tabla 4), se puede observar que la línea H13-26 de fruto amarillo presentó valores de luminosidad significativamente más altos (48,89) que todos los demás genotipos, los cuales exhibieron brillantez estadísticamente similar (38,59 a 42,46). Valores similares de brillantez entre 33,49 y 45,2 fueron reportados por ^{Preczenhak et al. (2014}) en 64 genotipos de tomate cherry (S. lycopersicum var. cerasiforme) provenientes de Brasil, siendo el genotipo de fruto color amarillo oro el que presentó el valor más alto. Sin embargo, ^{Csambalik et al. (2014}) encontraron brillantez de fruto más bajas (30,47 y 33,91) en seis genotipos de tomate cherry. De acuerdo con Preczenhak et al. (2014) para el tomate cherry el brillo ideal de fruto está entre 38,0 y 40,0; por lo que los genotipos H13-30, H13-31, L-ChNg1 y L-ChNg2 (38,6 a 39,7) presentaron características deseables para este carácter de calidad.

Croma. La pureza de color del fruto no presentó valores significativos en ninguno de los niveles de CE evaluados, cuyos valores fluctuaron entre 32,72 y 34,72 (Tabla 3). ^{Cruz-Crespo y Sandoval-Villa (2011}) señalaron para frutos de tomate 'Charleston' producidos con cuatro concentraciones de la solución de Steiner (0, 50, 75 y 100%), un rango de datos de 21,86 a 22,43. Sin embargo, ^{Kim et al. (2008}) encontraron incrementos significativos de croma (31,9 a 34,4) de frutos de 'Durinta' a niveles de conductividad más altos a los evaluados en este trabajo (2,8 a 7,7 dS m^-1).

La línea H13-26 de fruto amarillo presentó significativamente el valor de croma más alto (44,86), en contraste L-ChNg2 con 26,9 fue la de menor intensidad de color (Tabla 3). ^{Preczenhak et al. (2014}) indicaron valores estadísticamente menores (16,26 y 29,40) para 64 accesiones de tomate tipo cherry (S. lycopersicum var. cerasiforme) cosechadas en Brasil, donde de forma coincidente las de fruto amarillo presentaron los valores más altos. Resultados similares son señalados por ^{Csambalik et al. (2014}) quienes encontraron valores de cromaticidad entre 21,12 y 26,09 en seis genotipos tipo cherry cultivados en Turquía. Según Preczenhak et al. (2014), valores de croma cercanos a cero representan colores combinados y opacos, mientras que valores próximos a 60 indican colores puros y vivaces; en el presente estudio, los materiales analizados presentaron intensidades de color aceptables, por lo que podrían ser susceptibles a ser aprovechados comercialmente o para su uso en programas de mejoramiento genético en la que se incluya este componente de color.

Ángulo hue. Con un comportamiento similar a la cromaticidad, la tonalidad de color no presentó diferencias significativas y sus valores fluctuaron entre 53,75 y 53,21° (Tabla 3). Estos resultados son similares a 58,0 y 62,95° reportadas en frutos de tomate 'Charleston' cultivados con tres concentraciones (50, 75 y 100%) de la solución de Steiner (^{Cruz-Crespo y Sandoval-Villa, 2011}). En contraste, ^{Kim et al. (2008}) al ajustar los valores de CE de 2,8 a 7,7 dS m^-1, encontraron una disminución significativa en la tonalidad de color del fruto de 59,7 a 53,5° en frutos de tomate 'Durinta'.

Tabla 4 Efecto del genotipo y la conductividad de la solución nutritiva sobre la calidad fisicoquímica en frutos de tomate cherry.  

Entre genotipos, la línea experimental H13-26 fue la de mayor tonalidad de color (71,7°) al superar significativamente a los genotipos de fruto rojo (H13-29, H13-30, H13-31 y H13-39), los cuales presentaron valores entre 49,5 y 50,9° (Tabla 3). En este sentido, ^{Csambalik et al. (2014}) reportaron valores similares (44,63 y 58,34°) en frutos rojos de seis cultivares de tomate cherry producidos en Hungría. El comportamiento observado en H13-26 de fruto amarillo concuerda con lo reportado por ^{Preczenhak et al. (2014}) para el genotipo 2091-44 también de fruto amarillo (85,76°).

Los valores de tonalidad de color (°hue) encontrados en esta investigación, específicamente en los genotipos con frutos de epidermis roja superan los 35 a 40°hue reportados por ^{Pandurangaiah et al. (2016}) para frutos comerciales cosechados con similar grado de madurez, sino más bien son coincidentes con el dato de 48° que corresponde a un tono rojo-naranja que también son reportados por estos mismos autores.

Firmeza. La modificación en los valores de la CE de 2,0 a 2,5 dS m^-1 modificó (P < 0,05) el comportamiento de la firmeza del fruto en 14,9% (1,07 a 1,23 N mm^-1) (Tabla 4). Resultados similares fueron reportados por ^{Juárez-López et al. (2013}) en cuatro genotipos nativos de tomate cherry cuyos valores mostraron un incremento de 6,9 a 7,8 N mm^-1 (10.8%), al elevar la concentración de la solución de Steiner de 50 a 100%. Por su parte, ^{Wang et al. (2007}) indicaron que al elevar la concentración de nitrógeno de 2,2 a 9,0 mmol L^-1 mejoró la firmeza de fruto de 4,5 a 5,9 kPa en el cultivar 'Chuanzhu'. Adicionalmente estos mismos autores, señalaron una disminución de 5,5 a 4,8 kPa, cuando los frutos se cultivaron con valores de concentración de 18,0 y 36,0 mmol L^-1 de nitrógeno, lo cual sugiere un efecto antagónico entre el crecimiento vegetativo y el desarrollo adecuado de características de calidad del fruto como la firmeza del fruto y la concentración de sólidos solubles.

Entre los diversos materiales evaluados se observó que las líneas experimentales de fruto negro (L-ChNg2, L-ChNg1) y fruto rojo (H13-39), presentaron valores de firmeza sobresalientes (1,29 y 1,44 N-mrrr¹) (Tabla 4) con relación a H13-26, H13-29, H13-30 y H13-31, cuyos valores fluctuaron entre 0,88 y 1,07 N-mrrr¹. Al realizar la búsqueda de trabajos realizados en este tipo de tomate, se encontró gran disparidad entre los diferentes reportes, como el realizado en cuatro genotipos nativos de tomate cherry por ^{Juárez-López et al. (2013}) (5,8 a 9,3 N-mm^-1). Por otro lado, de acuerdo con ^{Figueroa-Cares et al. (2018}), el fruto de tomate requiere un mínimo de firmeza (1,46 N mm^-1) para su comercialización como producto en fresco, lo que significa que, para el grado de madurez analizado en este trabajo, todos los materiales evaluados no satisfacen este requerimiento. Sin embargo, si se considera el tamaño y las características morfológicas de este tipo de tomate, la cosecha, empaque y comercialización se realiza por racimos completos; por lo que se reduce el daño mecánico y pérdida de valor económico.

Sólidos solubles totales. Se encontraron diferencias significativas en la concentración de SST de los frutos manejados a 2,5 y 3,0 dS m^-1 con valores de 7,04 y 7,08 °Brix, respectivamente (Tabla 4). ^{Feltrin et al. (2012}) indicaron un incremento lineal significativo respecto a la acumulación de sólidos solubles totales (5,8, 6,7, 7,6 y 7,9 °Brix), en frutos de tomate cherry 'Sweet Million' manejados con solución nutritiva y valores de conductividad eléctrica (1,5, 2,0, 2,5 y 3,0 dS m^-1) similares a los de este trabajo. Por su parte, al incrementar la concentración de la solución de Steiner de 50 a 100% en el manejo de cuatro variedades de tomate cherry, ^{Juárez-López et al. (2013}) reportaron un incremento de 5,89% en los valores de éste parámetro, cuya variación fue de 8,5 a 9,0 °Brix, lo que sugiere en parte un aumento en el sabor y una baja en el contenido de agua (^{Beckles, 2012}), como una de las consecuencias del desarrollo del proceso de maduración del fruto.

La mayor acumulación de SST entre las diversas líneas experimentales se presentó en H13-30 y H13-31, con medias de 7,62 y 8,14 °Brix (Tabla 4), sin embargo, H13-29 mostró un comportamiento similar con respecto a H13-30. Concentraciones más bajas de SST son reportadas por ^{Kavitha et al. (2014}) para 13 líneas experimentales provenientes de India y variedades comerciales cultivadas en España, con valores de 4,1 a 9,5 y de 5,47 y 8,71 °Brix, respectivamente. En contraste, ^{Ceballos y Vallejo (2012}) al evaluar el contenido de sólidos solubles totales en 30 colectas de tomate, donde incluyeron una variedad comercial ('Sweet Million'), indican un rango de valores entre 4,04 y 6,7 °Brix; comportamiento interesante debido al valor detectado para esta variedad (4,91 °Brix), la cual no supera a lo observado en los materiales analizados en este trabajo.

Acidez titulable (AT). La acidez del fruto mostró un incremento significativo de 0,46 a 0,50% cuando se modificó la CE de 2,5 a 3,0 dS m^-1 (Tabla 4). ^{Juárez-López et al. (2013}) describen una variación entre 0,70 y 0,73% de ácido cítrico nductividad eléctrica en líneas experimentales de 159 cherry en cuatro genotipos de tomate cherry cuando se cambió la concentración de la solución de Steiner de 75 a 100%. Con una conductividad eléctrica similar, ^{Feltrin et al. (2012}), reportaron para frutos tipo cereza del cultivar 'Cascade' valores de 0,33 a 0,34 mg ácido cítrico 100 g^-1, no obstante, también reportaron datos de 0,29 y 0,33 mg ácido cítrico 100 g^-1 cuando se usó un rango menor de conductividad (1,5 a 2,5 dS m^-1), comportamiento que se asocia directamente con un menor flujo de agua a través del xilema durante la maduración del fruto (^{Elia et al., 2000}).

Entre genotipos, se destacó H13-26 que presentó frutos con valores de porcentaje de ácido cítrico de 0,64, cuya variación máxima representó 53% con respecto a L-ChNg1 y L-ChNg2 de fruto negro (0,34 y 0,35) (Tabla 4). Un rango de valores similares de ácido cítrico de 0,35 a 0,60% fueron reportados por ^{Kavitha et al. (2014}). En este sentido, un valor alto producto de la relación entre acidez y contenido de sólidos solubles totales es un claro indicador de calidad (^{Feltrin et al., 2012}), que se asocia directamente con frutos de sabor agradable.

Vitamina C (VC). La concentración de ácido ascórbico fue afectada (P < 0,05) de manera puntual con una CE de 2,5 dS m^-1 en la solución nutritiva, con valores de 13,91 mg 100 g^-1 (Tabla 4). Variaciones entre los niveles de conductividad eléctrica de 1,0 a 2,0 y de 3,0 a 9,0 dS m^-1 manejadas en el cultivo de variedades de tomate cherry permitieron obtener contenidos de vitamina C de 31,7 a 32,9 y de 16,1 a 28,9 mg 100 g^-1, sin observar diferencia entre los rangos evaluados (^{Juárez-López et al., 2013}), lo cual también coincide con lo señalado para tomate tipo saladette de crecimiento indeterminado por ^{Fanasca et al. (2006}) quienes reportaron valores de 37 a 54 mg 100 g^-1. Por su parte, ^{Elia et al. (2000}) reportaron que la variación de la conductividad eléctrica de 2,0 a 4,0 dS m^-1 fue un factor a considerar en el incremento de 25.2% de vitamina en frutos del cultivar 'Naomi'.

En esta evaluación, se encontró que los frutos pequeños provenientes de H13-31 presentaron el contenido más alto de vitamina C (17,9 mg 100 g^-1) (Tabla 4). Al respecto, los niveles de vitamina C encontrados fueron similares a los descritos (12,79 a 21,40 mg ác. asc. 100 g^-1) por ^{Figueroa-Cares et al. (2018}) en genotipos nativos de tomate tipo cereza, y fueron superiores a lo descrito por ^{Leiva-Brondo et al. (2012}) en seis genotipos cherry cultivados en España (7,4 y 14,4 mg 100 g^-1). No obstante, autores como ^{Guil-Guerrero y Rebolloso-Fuentes (2009}) en un estudio donde se evaluó la composición nutrimental y capacidad antioxidante en ocho variedades de tomate cultivadas en España, indicaron un rango de valores de vitamina C de 39 a 263 mg 100 g peso fresco, los cuales superan por mucho a lo observado en este trabajo, lo cual se puede asociar por un lado al grado de selección para este carácter (^{Ranc et al., 2008}), así como por el nivel de sombreado al que fueron sometidos durante la etapa final de maduración, ya que según Leiva-Brondo et al. (2012) este compuesto muestra alta susceptibilidad a degradarse por efecto de la luz.

Fenoles totales (FT). El contenido de FT se mantuvo sin cambios en los niveles de CE utilizados, con valores que fluctuaron entre 3,36 y 3,58 mg 100 g^-1. En este sentido, ^{Bertoldi et al. (2008}) describieron variaciones no significativas con valores de 168,07 a 183,19 mg 100 g^-1 en frutos de tomate cherry 'Mascote', producidos con tres niveles de conductividad eléctrica en la solución de Steiner (3,0, 6,0 y 9,0 dS m^-1). Por su parte, ^{Krauss et al. (2006}) al utilizar niveles de conductividad más altos (6,5 a 13,5 dS m^-1), indicaron un incremento significativo de fenoles totales en 'Durinta' (28,5 a 48,1 mg 100 g^-1), donde las diferencias entre resultados puede estar asociado con la naturaleza del disolvente de extracción, debido a la presencia de compuestos antioxidantes con naturaleza química y polaridad contrastante que pueden o no ser solubles en un disolvente particular (^{Guil-Guerrero y Rebolloso-Fuentes, 2009}).

Entre los frutos evaluados, los correspondientes a H13-26 de color amarillo presentaron la mayor concentración de FT (4,34 mg 100 g^-1), el cual superó estadísticamente a H13-30, H13-39, L-ChNg1 y L-ChNg2, cuyo contenido fluctuó entre 2,57 y 3,75 mg 100 g^-1 (Tabla 4). ^{Noor Atiqah et al. (2014}) al evaluar materiales de tomate cherry amarillo y de tipo saladette de fruto rojo, reportaron que los genotipos de fruto amarillo mostraron los niveles más altos de fenoles totales (5,07 mg GAE g^-1) en relación con los de fruto rojo (4,28 mg GAE g^-1). Por otro lado, ^{Kavitha et al. (2014}) indicaron valores que superaron a los encontrados en este estudio (48,2 a 73,4 mg GAE 100 g^-1 de peso fresco) en frutos de 13 líneas de tomate cherry cultivados en India. Es importante mencionar que además de su alta concentración de fenoles totales, la línea experimental H13-26 se destaca por su tamaño medio, forma redonda y color amarrillo; caracteres de selección muy atractivos para el desarrollo de nuevos materiales de uso comercial, ya que de acuerdo con ^{Boches et al. (2011}) este tipo de características generan un reducido arrastre de alelos desfavorables para otros rasgos.

Licopeno (Li). Niveles de CE entre 2,0 y 3,0 dS m^-1 permitieron incrementar significativamente la presencia de licopeno de 7,89 a 10,75 mg 100 g^-1 (Tabla 5), comportamiento altamente asociado con la composición y concentración de la solución nutritiva, así como por efecto del grado de mejoramiento del material vegetal evaluado (^{Fanasca et al., 2006}). Resultados similares (42,0 a 49,4 mg 100 g^-1) fueron reportados por Juárez- López et al. (2013) para frutos de tomate cherry manejados con variaciones en la concentración de la solución de Steiner de 50 a 100%. Por su parte, ^{Feltrin et al. (2012}) indicaron valores de 5,5 a 7,3 mg 100 g^-1 obtenidos con conductividades de 1,5 a 3,5 dS m^-1 en la variedad de tomate cherry 'Sweet Million'.

Tabla 5 Efecto del genotipo y la conductividad eléctrica de la solución nutritiva sobre la calidad fisicoquímica en frutos de tomate cherry.  

De acuerdo con la comparación de medias (Tabla 5), se observa que entre las líneas experimentales de frutos rojos usados para determinar la concentración de licopeno, se destaca H13-39 con valores de 16,54 mg 100 g^-1, sin embargo, ésta no superó al genotipo L-ChNg1 el cual mostró un comportamiento similar (15,20 mg 100 g^-1) (Tabla 5), siendo el material de fruto amarillo (H13-26) el que presentó el nivel más bajo de éste pigmento (1,38 mg 100 g^-1); este incremento podría estar asociado con estrés salino causado por el gradiente osmótico durante el proceso de maduración (^{Elia et al. 2000}). Los resultados obtenidos son similares a lo reportado para este tipo de tomate por ^{Kavitha et al. (2014}) con 7,0 mg 100 g^-1 peso fresco. Sin embargo, no superó a lo indicado por ^{Pandurangaiah et al. (2016}) para la línea elite de germoplasma IIHR-249-1 con diferentes grados de madurez, con valores de 3 a 20 mg 100 g^-1 peso fresco, donde el valor máximo correspondió a un grado de madurez similar al utilizado en este estudio (> 90% de coloración de fruto). Adicionalmente, otros autores como Kavitha et al. (2014) también reportaron valores superiores (25 mg peso fresco) para ésta misma línea. Es importante señalar que este tipo de pigmento se encuentra en concentraciones bajas o nulas en frutos inmaduros (verdes) o de color amarillo (Pandurangaiah et al., 2016), contrario a lo que sucede con frutos con pigmentación negra, rosa y roja, cuyos contenidos pueden variar entre 10,2 y 11,7 mg 100 g^-1 de peso fresco o 26,1 a 76,7 mg 100 g^-1 de peso seco (^{Bhandari et al., 2016}; Pandurangaiah et al., 2016). Es por ello que H13-39 y L-ChNg1, son materiales susceptibles a ser considerados dentro de programas de mejoramiento genético enfocados a la obtención de genotipos cherry con altos niveles de licopeno (^{Ceballos-Aguirre et al., 2012}).

Capacidad antioxidante (CA). De manera similar a lo ocurrido con la concentración de FT y VC, la CA presentó variación (P < 0,05) como respuesta a la modificación de la CE de la solución nutritiva, cuyos valores estuvieron entre 45,96 y 53,01 mm TEAC g^-1 (Tabla 5). Con respecto a estos resultados, ^{Bhandari et al. (2016}) indicaron para nueve cultivares comerciales de tomate cherry una media de 46,3 mmol TE kg^-1 de peso seco, con un rango de 34,9 a 54,2; éstos mismos autores señalaron para líneas de germoplasma un dato promedio de 54,5, con un rango de valores que superó a las variedades comerciales (40,8 a 74,5 mmol TE kg^-1 de peso seco). Sin embargo, también existen reportes donde la modificación en los valores de la conductividad eléctrica (3,0, 6,0 y 9,0 dS m^-1) de la solución no afectó de manera significativa el comportamiento de la capacidad antioxidante (508,1 a 627,4 mol TEAC 100 g^-1) en frutos de tomate cherry 'Mascote' (^{Bertoldi et al., 2008}); variaciones que de acuerdo con ^{Figueroa-Cares et al. (2018}) pueden asociarse a la variedad, condiciones de manejo agronómico y el grado de madurez durante su determinación.

Con excepción del genotipo H13-39, los materiales de fruto de color amarillo y rojo destacaron por su mayor nivel de capacidad antioxidante, con valores que fluctuaron entre 55,5 a 60,60 mm TEAC g^-1 de PF (Tabla 5); donde de acuerdo con ^{Fanasca et al. (2006}), ^{Leiva-Brondo et al. (2012}) y ^{Pandurangaiah et al. (2016}) el fruto de tomate siempre se ha caracterizado por ser fuente de alta concentración de antocianinas (licopeno, luteína y p-caroteno), ácido ascórbico, vitaminas y compuestos polifenolicos, que en su conjunto interactúan entre sí, dando como resultado la disminución en la actividad de diversos compuestos oxidativos. En este sentido, ^{Noor-Atiqah et al. (2014}) señalaron que los frutos con tonalidades amarillas presentan mayores niveles de actividad antioxidante con respecto a los de color negro y rojo, y conforme avanza el grado de madurez la actividad antioxidante también se incrementa (^{Ceballos-Aguirre et al., 2012}; Pandurangaiah et al., 2016). Por otro lado, valores de capacidad antioxidante menores fueron reportadas por ^{Kavitha et al. (2014}) (8,83 y 28,56 mg AEAC 100 g^-1) en frutos de trece líneas de tomate cherry.