INTRODUCCIÓN

La plastinación es considerado el mejor mé todo para la preservación de tejido animal pere-cible, para el estudio de la anatomía de diversas especies (^{Sora y Cook, 2007}).

El ovario de la yegua, en comparación con el de otros mamíferos domésticos, tiene la zona vascular en la superficie del órgano. Esa zona ro dea como una campana el ovario en el margen mesovarial. En la parte opuesta del ovario queda una zona libre de vasos sanguíneos mayores, la fosa ovárica (fossa ovarii), que está cubierta por un epitelio germinativo (^{Liebich, 2010}). En la fosa ovárica, el folículo maduro (folículo de Graaf) alcanza la superficie del ovario. En este lugar se desarrolla el estigma, que es donde tiene lugar la ovulación y se forma el cuerpo luteo (^{König et al. 2015}).

El diagnóstico ovulatorio transrectal, por la estructura anatómica del ovario de la yegua, no es tan fácil como en la vaca, donde los folículos y los cuerpos luteos se ubican en la zona paren-quimatosa, en la superficie del órgano. Por este motivo, actualmente, para este diagnóstico en la yegua se usa el metodo de ultrasonido (^{Aurich, 2009}; ^{Gastal, 2011}), en donde se aprovecha la di ferencia de densidad entre el líquido folicular y la teca del folículo, lo que entrega una imagen vir tual, a diferencia de las secciones plastinadas, las cuales entregan una imagen real de la forma y de la estructura del folículo y del cuerpo luteo. Estos secciones son secas, sin olor, no tóxicas y se pue den conservar en forma permanente. Se pueden usar en la enseñanza de estudiantes de medicina veterinaria, en la clínica y en la anatomía. Se pue den mostrar también al dueño de los animales en el cual se hizo el diagnóstico en el ovario.

Existen diversas técnicas de plastinación, en tre las cuales destaca la E12. Esta técnica consiste en que a partir de tejido animal fresco, se hacen láminas o cortes transparentes de un grosor de 2 a 5 mm, que permiten visualizar tanto estructuras macroscópicas como submacroscópicas, eviden ciando detalles de la posición y estructura ana tómica tanto normal como patológica de diversos órganos (^{Sora y Cook, 2007}).

Este trabajo pretende entregar mayores ante cedentes sobre la anatomía seccional del ovario de yegua con el método de plastinacion E12 (^{Sora y Cook, 2007}), dado que existe muy poca infor mación.

MATERIALES Y MÉTODOS

En un matadero para equinos ubicado en la ciudad de Freital, cerca de Leipzig, Alemania, se recolectaron 14 ovarios de yeguas. Se conocía la edad de los animales pero no la etapa hormonal. Los ovarios se examinaron macroscópicamente. Mediante palpación se localizaron los folículos, eligiendo dos ovarios izquierdos, uno de una ye gua de 8 años y otro de una yegua de 11 años. En la palpacion de los órganos no fue posible hacer la diferenciación entre folículos y cuerpos luteos.

Para hacer los cortes E12, se empleó el si guiente método: los ovarios se fijaron durante 8 días en una solución de formalina al 4%, a una temperatura de 5^oC. Despues se enfriaron por 5 días a una temperatura de 45^oC bajo cero. Esta temperatura de congelación previene la forma ción de microcristales de hielo en el tejido. Los órganos enfriados se seccionaron en cortes con un grosor aproximado de 2 milímetros. Después los cortes se deshidrataron en baños de acetona a una temperatura de 25^oC bajo cero. Los cortes obtenidos se procesaron a continuación según la técnica de plastinación estándard E12, descri ta por ^{An y Zhang (1999}), ^{Lane (1990}), y Sora y Cook (1999). Finalmente, los cortes se impregna ron con la resina E12, y se secaron a una tempe ratura de 45^oC.

RESULTADOS

En una de las secciones del ovario de la yegua de 8 años se encontró un folículo maduro (de Graaf) poco antes de la ovulación. Cerca de la fosa ovárica, la pared del folículo era mucho más delgada. Las tecas del folículo, interna y externa, no presentaron pliegues. En el mismo ovario no se encontró ningun cuerpo luteo.

En el ovario de la yegua de 11 años se encon traron muchos folículos de diferente tamaño. En el mismo ovario se encontró un cuerpo luteo de una generacion anterior. En los tres cortes (Fig. 1, 2 y 3) se pueden ver los cuerpos ováricos funcio nales, folículos y cuerpo luteo, al igual que en las imágenes de ultrasonido.

DISCUSIÓN

Existen muchas publicaciones sobre cuerpos funcionales de los ovarios (folículos y cuerpos lu teos) de los rumiantes y carnívoros 1987; ^{Rüsse y Sinowatz, 1991}), junto con investi gaciones sobre los vasos sanguíneos del ovario de la yegua mediante la técnica de inyecciones con metilmetacrilato (^{König y Ries 1987}; König, 1995). Sin embargo, hasta ahora no hay publicaciones sobre el ovario de la yegua mediante la utiliza ción de secciones plastinadas transparentes con la técnica E12. Sobre todo faltan datos sobre la forma, tamaño y la ubicacion de los cuerpos fun cionales (folículos y cuerpos luteos) en secciones plastinadas con la técnica E12.

Corte plastinado E12 del ovario de una yegua de 8 años; se observa el folículo maduro de Graaf y el estigma*

Fig. 1 

Fig. 2 Corte plastinado E12 del ovario de una yegua de 11 años donde se observan múltiples folículos. Fig. 2. E12 slice of the ovary from an 11-year old mare with many follicles. 

En la yegua es muy importante precisar exac tamente el estadio del ciclo ovulatorio, para ele gir el momento óptimo de la inseminación. Esto actualmente no se realiza mediante la palpación transrectal sino que con el método de ultrasonido (^{Aurich, 2009}; ^{Glatzel, 2009}; ^{Gastal, 2011}).

Los vasos sanguíneos en el ovario juegan un rol importante en su funcionamiento. Ellos transportan los hormonas de la hipófisis al ovario para dirigir su función. Del ovario también se transportan, por medio de la sangre, hormonas que influyen en la la función cíclica de los otros componentes del aparato genital de la hembra. Otras hormonas que influyen en el crecimiento y la luteólisis del cuerpo luteo, alcanzan el ovario también por vía sanguínea (^{Aurich, 2009}). Otros órganos de gran importancia para el recién naci do, también se encuentran bajo la influencia de las hormonas del ovario, como por ejemplo, la glándula mamaria (^{Bartmann et al., 2010}). Los va sos sanguíneos, de gran tamaño en el ovario de la yegua, circulan por la túnica albuginea que cubre el ovario, en comparación con los otros mamífe ros domésticos (^{König y Ries, 1987}). En la vaca y otros mamíferos domésticos, estos vasos sanguí neos quedan en el centro del ovario, es decir en la médula ovárica. Desde el centro del ovario se distribuyen hacia la periferia, para alcanzar los folículos y cuerpos luteos que se ubican en la cor teza ovárica (cortex ovarii) (König et al., 1987). En todos los casos, para cada folículo y cuerpo luteo existe una arteria y una vena principal, que trans porta la sangre hacia el cuerpo funcional y desde este a todo el cuerpo del animal (^{Hees et al., 1988}; König, 1995; König et al., 2015). Con el método de corrosión (König, 1995) fue posible mostrar que alrededor del estigma, antes de la ovulacion en el ovario de la yegua, hay un borde de finos capilares, que rodean el estigma (König, 1995; König et al., 2015 ). Con técnicas de corrosión e histológicas, se encuentran capilares típicos para celulas hormonales alrededor de las células de la teca folicular, y de la celulas luteales (Hees et al., 1988). En los cortes plastinados se pueden ver muy bien los grandes vasos sanguíneos. Los capi lares, que se pueden observar con el microscopio electrónico de barrido en las piezas de corrosión (Hees et al., 1988), no son visibles en los cortes plastinados.

Fig. 3 Corte plastinado E12 del ovario de una yegua de 11 años, donde se observan múltiples folículos y un cuerpo luteo*. Fig. 3. E12 slice of the ovary from an 11-year old mare with many follicles and corpus luteum*. 

CONCLUSIONES

Mediante la utilización del método de plastinación E12, se pueden observar los folículos y cuerpos luteos del ovario, de utilidad en la clínica veterinaria y en la enseñanza universitaria.

El método de plastinación E12 permite obte ner cortes de ovario trasnslúcidos y atóxicos, en donde se puede observar hasta el estigma en el folículo maduro de Graaf.

Los cortes de ovario obtenidos mediante este método no se deterioran, lo que permite conser varlos en forma permanente.